产品包装：

产品编号	产品名称	包装	保存温度
DW2100-A	阿利新蓝染色液	100ml	2-8℃，避光
DW2100-B	氧化剂	100ml	2-8℃，避光
DW2100-C	Schiff染色液	100ml	2-8℃，避光
DW2100-D	苏木素染色液	100ml	室温，避光
DW2100-E	酸性分化液	100ml	室温
DW2100-F	Scott蓝化液	100ml	室温

 

产品介绍：

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用PAS技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。

阿利新蓝和PAS技术联合使用可鉴别同一组织切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。这种技术也常用作广泛检测黏蛋白的手段。该技术染色阴性，可明确断定该物质不是黏蛋白。在大多数方法中，切片先经标准的阿利新蓝(pH值为2.5)染色，在使用PAS技术。阿利新蓝可将唾液黏蛋臼、硫黏蛋臼和蛋臼多糖染成蓝色。PAS技术可将中性黏蛋臼染成深红／红紫色，同时将既含中性黏蛋臼有含酸性黏蛋白的组织和细胞染成深浅不同的紫色，这是有千阿利新蓝与Schiff试剂结合并反应。上述染色常可出现在含有中性黏蛋白和唾液黏蛋白的小肠杯状细胞中。

阿利新蓝是类铜钦花青染抖，这种阳离子染料与酸性基团结合，也即阿利新蓝与组织内含有的阴离子基团如狻基和硫酸根形成不溶性复合物。分子中带正电荷的盐键与酸性黏蛋白多糖物质中带负电荷的酸性基团结合形成不溶性的复合物而呈蓝色，再与PAS进行复合染色，就能显示三种不同黏液物质成分。

 

保存条件：

2-8°C，避光保存，有效期6个月。

 

自备材料：

蒸馆水、系列乙醇。

 

使用说明（仅供参考）：

a. 切片脱蜡至水，蒸饿水水洗2min。

b. 阿利新蓝染色液染色10-20min。蒸熘水洗3次，每次1-2min。

c. 放入氧化剂中进行氧化5min。自来水冲洗，蒸熘水浸洗2次。

d. 放入Schiff染色液浸染10-20min。

e. 倾去Schiff染色液，流水冲洗10min。

f. 苏木素染色液染核1-2min，水洗。

g. 用酸性分化液分化2-5s，水洗。

h. 用Scott蓝化液返蓝3min，水洗3min。

i. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。

 

染色结果：

糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白	紫红色
酸性黏蛋白(硫黏蛋白和唾液黏蛋白)	蓝色
蛋白多糖和透明质酸	蓝色
备注:含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色至紫色。

 

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽措干净，否则影响染色效果。

2. 氧化剂氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18-22℃最佳。

3. 试剂(A)、试剂(B)、试剂(C)应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前，最好提前30min取出恢复到室温后，避光暗处使用。

4. 酸性分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 切片在氧化剂和Schiff染色液中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6. 如用苏木素染色液复染细胞核时一定要淡染，以免影响阳性物质观察，目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。

7. 研究表明，阿利新蓝-PAS联合技术的染色顺序可影响最终结果。PAS枝术在阿利新蓝染色之前时，中性黏蛋白和糖原可染成紫色。与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

 

本产品在文章中的写法：

英文： Dowobio （Shanghai，China）

中文： 上海多沃生物科技有限公司  Dowobio，上海