当前位置:首页>病理及染色试剂>糖原PAS染色液试剂盒(过碘酸-雪夫染色液试剂盒)
产品包装:
产品编号 |
产品名称 |
包装 |
保存温度 |
DW2097-A |
氧化剂 |
50ml |
4℃,避光 |
DW2097-B |
Schiff染色液 |
50ml |
4℃,避光 |
DW2097-C |
苏木素染色液 |
50ml |
RT,避光 |
DW2097-D |
酸性分化液 |
50ml |
RT |
产品介绍:
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946年最先使用PAS技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色液不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质,以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。
氧化剂能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于氧化剂还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好氧化剂的浓度和氧化时间,使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基,又不至于过氧化,这是很关键的步骤。
本糖原PAS染色液的特点:采用特有配方技术,大大增强了染色效果;性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需1h左右。
保存条件:
2-8°C,避光保存,有效期6个月。
自备材料:
10%福尔马林固定液、蒸馆水、乙醇。
使用说明(仅供参考):
细胞染色步骤:
a.做好细胞爬片或者涂片,用固定液固定(推荐用95%的乙醇)10min。
b. 自来水冲洗2-3min,再用蒸馈水浸洗2次。
c. 置于氧化剂中,室温放置5-8min,一般不宜超过10min。
d. 自来水冲洗1次,再用蒸馆水浸洗2次。
e. 样本放入Schiff染色液,詈于室温阴暗处,浸染10-20min。
f. 自来水冲洗10min。
g. 样本置于苏木素染色液中,染细胞核1-2min。
h. 酸性分化液分化2-5s。
i. 自来水冲洗10-15min使其返蓝或者1%的氨水返蓝1分钟。
j. 封片观察。
切片:
a. 常规固定,常采用10%的福尔马林,常规脱水包埋。
b. 石蜡切片脱蜡入蒸馈水;冰冻切片直接入蒸馆水。
c. 自来水冲洗2-3min,再用蒸馈水浸洗2次。
d. 置于氧化剂中,室温放置5-8min,一般不宜超过10min。
e. 自来水冲洗1次,再用蒸馆水浸洗2次。
f. 6样本放入Schiff染色液,詈于室温阴暗处,浸染10-20min。
g. 自来水冲洗10min。
h. 样本置于苏木素染色液中,染细胞核1-2min。
i. 酸性分化液分化2-5s。
j. 自来水冲洗10-15min使其返蓝。
k. 逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明,中性树胶封固。
染色结果:
PAS反应阳性物质 |
红色或紫红色 |
细胞核 |
蓝色 |
细胞质 |
深浅不一的红色 |
备注:颜色深浅很大程度上取决于样品在氧化剂溶液盒Schiff染色液中作用时间的长短。
阴性对照(可选):
1.取淀粉酶1g溶解于PBS(pHS.3)100ml,处理30-60min,与其他切片共同入氧化剂。结果应为阴性。
2.(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30-60min,与其他切片共同入氧化剂。结果应为阴性。
3.(备选方案)如果对照片采用其自身样本,对照片不经过氧化剂这一步,直接加入Schiff染色液。结果应为阴性。
注意事项:
1. 切片脱蜡应尽措干净,否则影响染色效果。
2. 氧化剂氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18-22℃最佳。
3. 氧化剂和Schiff染色液应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前,最好提前30min取出恢复到在室温后,避光暗处使用。
4. 酸性分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5. 切片在氧化剂和Schiff染色液中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6. 本染色液常用于常规组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议采购糖原PAS染色试剂盒(细胞真菌专用),因为其氧化剂和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
7. 冷冻切片染色时间尽量要短。
8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
9. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
本产品在文章中的写法:
英文: Dowobio (Shanghai,China)
中文: 上海多沃生物科技有限公司 Dowobio,上海